Examen Integrado Bioquímica study plan

Examen Integrado Bioquímica · Give each week a clear focus.

8 weeks · About 6 hours per week

Week 1

Estructura y función de biomoléculas

Dibujar de memoria la estructura química de los 20 aminoácidos clasificándolos por polaridad, carga y grupos funcionales
Explicar la jerarquía estructural de proteínas (primaria a cuaternaria) y predecir el efecto de una mutación puntual sobre el plegamiento
Resolver problemas de cinética de unión ligando-proteína interpretando curvas de saturación y valores de Km aparente
Comparar la estructura y función de monosacáridos, disacáridos y polisacáridos con énfasis en enlaces glucosídicos

Cuadro sinóptico propio de los 20 aminoácidos y un esquema de niveles estructurales proteicos con al menos 3 mutaciones ejemplo resueltas

Week 2

Describir la estructura de nucleótidos y ácidos nucleicos y diferenciar ADN de ARN por composición y conformación
Explicar el modelo de Michaelis-Menten y derivar el significado de Vmax y Km en términos prácticos
Interpretar gráficos de Lineweaver-Burk y distinguir inhibición competitiva, no competitiva y acompetitiva
Calcular actividad enzimática y describir el efecto de pH, temperatura y cofactores sobre la velocidad

Set de 10 problemas de cinética enzimática resueltos con gráficos de dobles recíprocos etiquetados por tipo de inhibición

Week 3

Explicar las leyes de la termodinámica aplicadas a reacciones bioquímicas y calcular variación de energía libre
Describir el acoplamiento energético del ATP y el papel del potencial de transferencia de grupo fosfato
Trazar la glucólisis paso a paso identificando enzimas reguladoras, sustratos, productos y sitios de fosforilación a nivel de sustrato
Contrastar el destino del piruvato en condiciones aerobias y anaerobias y explicar la gluconeogénesis y el ciclo de Cori
Explicar la regulación recíproca de glucólisis y gluconeogénesis por efectores alostéricos y hormonas

Mapa metabólico dibujado a mano de glucólisis, gluconeogénesis y glucogenólisis con enzimas reguladoras y efectores marcados

Week 4

Describir el complejo piruvato deshidrogenasa, el ciclo de Krebs y la cadena respiratoria con sus complejos y transportadores
Calcular el rendimiento de ATP por glucosa y por ácido graso según la teoría quimiosmótica
Explicar la beta-oxidación de ácidos grasos, su activación y transporte mitocondrial mediante carnitina
Describir la síntesis de ácidos grasos y contrastarla con su degradación en compartimento, cofactores y regulación

Tabla comparativa de rendimiento energético (glucosa vs. ácido graso) y esquema de beta-oxidación con balance de ATP por ciclo

Week 5

Clasificar las lipoproteínas por densidad y composición y explicar el transporte inverso de colesterol
Relacionar dislipidemias con defectos en receptores, apolipoproteínas o enzimas específicas
Describir el ciclo de la urea identificando enzimas, sustratos y regulación
Explicar transaminación, desaminación oxidativa y destino de los esqueletos carbonados de aminoácidos
Conectar defectos del metabolismo de aminoácidos con fenilcetonuria, alcaptonuria y homocistinuria

Mapa del ciclo de la urea con enzimas y un cuadro de correlación entre 5 errores metabólicos y su presentación clínica

Week 6

Explicar la replicación del ADN: horquilla, ADN polimerasas, cebadores, corrección de errores y telómeros
Describir la transcripción en procariotas y eucariotas diferenciando ARN polimerasas, promotores y factores de transcripción
Detallar el procesamiento del ARNm: caperuza, poliadenilación y empalme alternativo
Explicar la traducción: código genético, ribosomas, ARN de transferencia y factores de iniciación, elongación y terminación
Predecir el efecto de mutaciones silenciosas, de sentido erróneo y sin sentido sobre la proteína resultante

Diagrama del dogma central anotado con enzimas y un ejercicio de traducción resuelto a partir de una secuencia de ARNm dada

Week 7

Explicar niveles de regulación génica: epigenética, operones, factores de transcripción y ARN no codificantes
Describir vías de señalización mediadas por receptores acoplados a proteína G, tirosina cinasa y receptores nucleares
Interpretar pruebas de laboratorio habituales (glucosa, hemoglobina glicada, perfil lipídico, enzimas hepáticas) en contexto fisiopatológico
Relacionar alteraciones del metabolismo con diabetes, aterosclerosis y errores innatos del metabolismo

Estudio de 3 casos clínicos con perfil bioquímico resuelto: interpretación de analitos, mecanismo fisiopatológico y diagnóstico probable

Week 8

Integrar el estado posprandial y de ayuno describiendo flujos entre hígado, músculo y tejido adiposo
Explicar la regulación hormonal coordinada por insulina, glucagón y catecolaminas sobre el metabolismo
Seleccionar la técnica de laboratorio adecuada (cromatografía, electroforesis, espectrofotometría, PCR) según el analito
Resolver preguntas integradoras de examen mixto cronometrado en todos los dominios

Examen simulado de 60 preguntas cronometrado con revisión de errores y plan de repaso final priorizado por dominio débil

Week 2: Resolver 10 problemas de cinética enzimática con al menos 8 correctos, identificando el tipo de inhibición en cada gráfico

Week 4: Calcular de memoria el rendimiento de ATP de glucosa y de un ácido graso de 16 carbonos con desviación menor al 10%

Week 6: Traducir correctamente una secuencia de ARNm de 30 nucleótidos y clasificar el efecto de tres mutaciones dadas

Week 8: Obtener al menos 70% en el examen simulado integrador y completar la revisión de todos los errores